1.前夜將磁珠及勻漿管洗淨置入75%乙醇中浸泡。早晨取出磁珠和勻漿管,自然晾幹;也可放入烤箱中,速度較快。

　　2.裂解液配製：RIPA:PMSF=100:1,現配現用。置入4℃冰上。

　　3.抽蛋白：

　　適量組織加入裂解液中。

　　勻漿操作。

　　手工勻漿：將剪碎的組織倒入玻璃勻漿管中,再將剩餘的1/3勻漿介質或生理鹽水衝洗殘留在燒杯中的碎組織塊,一起倒入勻漿管中進行勻漿,左手持勻漿管將下端插入盛有冰水混合物的器皿中,右手將搗杆垂直插入套管中,上下轉動研磨數十次(6-8分鍾),充分研碎,使組織勻漿化。

　　機器勻漿：用JJ-2組織搗碎勻漿機上下研磨製成10%組織勻漿,也可用內切式組織勻漿機製備(勻漿時間10秒/次,間隙30秒,連續3~5次,在冰水中進行),皮膚、肌肉組織等可延長勻漿時間。

　　超聲粉碎：用超聲粉碎機進行粉碎,可用超聲波發生器以振幅14微米超聲處理30秒使細胞破碎,也可用國產超聲波發生儀,用40安培,5秒/次,間隙10秒反複3-5次。

　　反複凍融：培養或者分離的細胞可以用以上的方法勻漿,也可以反複凍溶3次左右(即讓細胞加適量的低滲液或者雙蒸水放低溫冰箱中結冰,溶解,再結冰,再溶解,反複3次左右),但有部分酶活力會受影響。

　　將組織勻漿轉入1.5ml的EP管中(離心管)。12000r/min 4°C離心15min。

　　離心後EP管中液體分三層,提取中間無色液相,移入新的EP管中。可-80℃保存。

　　大多數蛋白樣品可通過比色測定法定量。在典型的蛋白測定中,化學試劑加入到蛋白樣品溶液裏產生顏色變化,這一變化可由分光光度計或酶標儀檢測,並與已知濃度的蛋白標準曲線作比較。如果樣品數量較多,可以同時使用兩種測定用酶標儀自動檢測。當你選擇一種蛋白測定方法時需要考慮兩個因素：緩衝液的化學組成和檢測的蛋白量。